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环亚集团·AG88血清脂蛋白电泳实验流程优化

发布时间:2025-03-22   信息来源:赖广绍

实验原理是通过将血清脂蛋白预染后进行电泳分离。具体步骤是使用脂类染料(例如苏丹黑或油红O)对血清脂蛋白进行染色,随后将预染的血清置于琼脂糖凝胶板上进行电泳。电流通入后,脂蛋白会向正极移动,并分离出多个区带,以便于后续分析。

环亚集团·AG88血清脂蛋白电泳实验流程优化

试剂与器材

1. 巴比缓冲液(pH 8.6,离子强度 0.075):混合巴比/妥钠154g,巴比/妥276g,EDTA酸0.292g,加水至1000ml。
2. 三羟甲基氨基甲烷缓冲液(pH 8.6):混合三甲基氨基甲烷121.2g,EDTA酸0.29g,NaCl158.5g,加水至1000ml。
3. 琼脂糖凝胶:将0.45g琼脂糖与50ml三羟甲基氨基甲烷缓冲液和50ml水加热至沸腾,待琼脂糖完全溶解后立即停止加热。
4. 挖槽工具:为制作切口刀,可用刀片与夹板固定。挖槽小匙可用铜丝制成,端部磨平。
5. 电泳槽与电泳仪:使用与血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳相同的设备。

操作步骤

1. 预染血清:将0.2ml血清与0.2ml苏丹黑染色液混合,在37℃水浴中染色30分钟,随后离心(2000转/分钟,约5分钟)。
2. 制备琼脂糖凝胶板:将已配置的0.45%琼脂糖凝胶通过吸管浇注到载玻片上,每片25ml,静置约半小时以待凝固。
3. 点加血清:在凝固后的琼脂糖凝胶的一端2cm处切入,并取出小条凝胶。用小片滤纸吸干小槽水分,吸取约15μl预染的血清注入槽内。
4. 电泳:将凝胶板置于电泳槽中,确保样品在阴极一端。两块三层纱布先浸入巴比/妥缓冲液后贴在两端,确保其他端浸入电泳槽中的巴比/妥缓冲液。接通电源,设定电压为120-130V,电流为3-4mA,电泳15至55分钟,观察分离的色带。

注意事项

1. 使用新鲜的空腹血清为电泳样品。
2. 每块凝胶上可并行挖两个小槽,以加两个样品。
3. 可使用与小槽形状相同的有机玻璃片,在琼脂糖凝固前固定到适当位置,待凝固后再取出,留下小槽以便直接加样。
4. 若需要保存电泳样本,可将凝胶板放在清水中脱盐2小时,再在80℃的烘箱中烘干。

结果及临床意义

1. 正常人血清脂蛋白会出现三条区带,自负极向正极依次为β-脂蛋白、前β-脂蛋白和α-脂蛋白,原点无乳糜微粒。
2. 若前β-脂蛋白比α-脂蛋白深度明显,且血清甘油三酯升高可以判定为Ⅳ型高脂蛋白血症。
3. 若观察到β-脂蛋白区带明显加深,结合血清总胆固醇增高可判定为Ⅱa型;若血清总胆固醇增高而甘油三酯略升高则判定为Ⅱb型。
4. 若β-和前β-两区带相连,形成“宽β区带”,表明血清甘油三酯及胆固醇均增高,可判定为Ⅲ型。
5. 如原点出现乳糜微粒,且β、前β均呈正常或降低,且甘油三酯明显升高,判定为Ⅰ型。

注意:岑特生物所售产品仅供科研实验使用,严禁用于临床!如需了解更多信息,请访问环亚集团·AG88